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動物實驗樣本應(yīng)該這樣取材和保存!

發(fā)布時間:2024-04-19
一些常規(guī)實驗樣本保存方法及注意事項,,包括:分子實驗,、蛋白實驗、病理實驗,、透射電鏡,、生化檢測。

 科研狗做了一天的實驗,,本來高高興興,。

實驗試劑,復(fù)核,,完美,!

實驗步驟,,復(fù)核,完美,!

實驗儀器,,復(fù)核,也完美,!

~~

                             1.jpg                  

難道,,這就是傳說中的水逆!,?

 

科研狗都知道水逆是個玄學(xué),,但有時候水逆寶寶表示


 3.jpg

那么到底是哪里出了問題呢?其實有時候我們在取樣和樣本保存的時候,,一些細(xì)節(jié)問題沒注意到,,那么就會導(dǎo)致整個實驗所有的努力白費。特別是一些剛進(jìn)實驗室的熊孩子們,,一頓操作猛如虎,,一看結(jié)果全是哭!

 

好了,,好了,,小拓今天就來整理一下,一些常規(guī)實驗樣本保存方法及注意事項,,包括:分子實驗,、蛋白實驗、病理實驗,、透射電鏡、生化檢測,。

 

一,、分子實驗(RNA/DNA)

 

RNA提取(QPCR/測序等)

1.組織樣本

組織取材在組織離體 30min 內(nèi)完成,,取樣的動作要盡量快速利索,,將組織切成任一方向小于 0.5 cm 的薄片(盡可能剪碎),抽取 1ml trizol 溶液于 2ml凍存管內(nèi),,將樣本完全浸沒于trizol溶液(如0.4g樣本需要約2.0 mLtrizol的溶液),。

液氮速凍后,-80 度保存,。

注意:為完全有效的保護(hù)組織樣本,,該組織樣本應(yīng)完全浸沒入 trizol 溶液中并且組織樣本的任何一邊的最大厚度不應(yīng)超過 0.5 cm。

 

2.細(xì)胞樣本

細(xì)胞收集后用PBS緩沖液快速洗一次,,每5×106個細(xì)胞加入1 ml trizol,,用槍頭反復(fù)抽打,,直至看不見成團(tuán)的細(xì)胞塊,整個溶液呈清亮而不粘稠的狀態(tài),;液氮速凍,,-80 保存。

3.血液樣本

1)加入1 ml TRIzol和 200-300μL新鮮血液(TRIzol:血液 = 3:1-5:1),,用移液器吹打幾次以幫助裂解樣品中的細(xì)胞,;

2)樣品劇烈震蕩混勻1~2 min,直到絮狀物全部溶解,;

3)室溫孵育5 min以使核蛋白體完全分解,;

4)寫好編號,封口膜封存,,-80 ℃凍存,。

注意:冰凍血液溶解過程中會有破碎的細(xì)胞釋放RNA酶,因此建議在冰凍前加入TRIzol,,切勿直接凍存新鮮血液,,保存好的血液應(yīng)避免反復(fù)凍融。

運輸條件:干冰運輸

DNA提取

(1)組織樣本:取材后,,PBS清洗2-3次,,液氮速凍, -80 ℃保存

(2)細(xì)胞樣本:細(xì)胞收集沉淀后,,液氮速凍,, -80 ℃保存

運輸條件:冰袋運輸

 

二、蛋白實驗(WB/ELISA)

組織樣本:取新鮮組織,,用無塵紙快速吸去血液,,將組織剪成小塊,放入裝有液氮的錫箔紙中速凍后,,放入液氮預(yù)冷的離心管中,,液氮速凍5min后,-80度保存,。

細(xì)胞樣本:收集細(xì)胞懸浮液于1.5ml的離心管中,,離心去上清,PBS洗滌三次,,液氮速凍5min后,,-80 ℃保存。

血清樣品:收集全血,,室溫放置2h,,4℃ 3000rpm/min 離心10min,吸取上部的血清即可,,-80度保存,。

運輸條件:干冰運輸

全血:新鮮抗凝血,,避免劇烈震蕩,避免凝血,;立即提取,。

 

三、病理實驗

 

1.    石蠟切片

組織樣本:取材后,,PBS 清洗 2-3 次,,使用 4%多聚甲醛固定,組織樣本需完全浸泡在固定液中,,固定液的容量應(yīng)足夠,,一般固定液與組織塊的體積比率應(yīng)大于 10:1。室溫保存,。

注意:取材樣本要新鮮,,否則細(xì)胞內(nèi)溶酶體會破裂,造成細(xì)胞自融,。

細(xì)胞樣本:細(xì)胞爬片后,,4%多聚甲醛固定30min,換PBS浸沒4度保存,。

運輸條件:常溫運輸

 

其他組織保存,、固定等
表1.png

2.    冰凍切片

取新鮮組織,PBS清洗2-3次后,,立即用OCT包埋,,-80度固定/保存?;蛘咝迈r組織,,PBS清洗后,-80度保存,。

運輸條件:干冰運輸

 

其他染色保存,、固定等
表2.png
 

3.透射電鏡樣本

3.1動物組織樣本

① 1-3min內(nèi)取樣,取樣組織2mmX2mm大小,,盡量薄。如來不及修整組織大小可先于電鏡固定液內(nèi)固定半小時左右待組織變硬以后再修整組織進(jìn)行后固定,。超出此范圍后組織會無法完全固定,,后續(xù)實驗無法完成,務(wù)必請重視此過程,。

② 取材時盡量精確到需要觀察的目的部位(如觀察腎小球取腎皮質(zhì),;觀察胰島取胰島豐富的胰尾;皮膚,,腸胃等在固定液中易打卷的組織可將組織粘在濾紙上進(jìn)行固定),。

③ 取材時一定注意避免鑷子擠壓等機(jī)械損傷,,刀片要鋒利避免挫傷組織。

④ 組織取下后立即投入電鏡固定液內(nèi)室溫固定2h,,再轉(zhuǎn)移至4℃保存,,4℃冰袋運輸,在保存和運輸過程中固定液切勿冷凍結(jié)冰,。4℃時樣本可保存1個月左右,。

3.2細(xì)胞樣本

貼壁細(xì)胞:實驗?zāi)康闹攸c觀察細(xì)胞連接,將培養(yǎng)好的細(xì)胞棄培養(yǎng)基不經(jīng)漂洗迅速加電鏡固定液用細(xì)胞刮沿一個方向輕輕刮下細(xì)胞收集到離心管內(nèi)(避免刮破細(xì)胞),。實驗?zāi)康闹攸c觀察細(xì)胞器,,對細(xì)胞形態(tài)形狀無特殊要求,用胰酶消化,,離心收集細(xì)胞要肉眼可見細(xì)胞沉淀芝麻至綠豆大小,,棄固定液后加新的電鏡固定液室溫固定2h,再轉(zhuǎn)移至4℃保存,,4℃冰袋運輸,,在保存和運輸過程中固定液切勿冷凍結(jié)冰。

懸浮細(xì)胞:離心收集細(xì)胞要肉眼可見細(xì)胞沉淀芝麻至綠豆大小,,棄培養(yǎng)基后加電鏡固定液室溫固定2h,,再轉(zhuǎn)移至4℃保存,4℃冰袋運輸,,在保存和運輸過程中固定液切勿冷凍結(jié)冰,。

 

四、生化實驗

組織樣本:取新鮮組織,,用PBS清洗去血液,,將組織剪成小塊,放入凍存管中,,液氮速凍5min后,, -80℃保存

血清樣本:全血標(biāo)本室溫放置2小時3000rpm/min離心15min,-80℃保存,。

血漿樣本:可用EDTA或肝素作為抗凝劑,,標(biāo)本采集后30分鐘內(nèi)于2-8℃3000rpm/min離心15min, -80℃保存,。

細(xì)胞樣本:收集細(xì)胞沉淀,, -80℃保存

運輸條件:干冰運輸

小提示:

1.血清與血漿的區(qū)別

注意:血清血漿顏色外觀無差別,不備注清楚無法肉眼分辨,。

血清:全血中不加抗凝劑或加促凝劑,,血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黃色透明液體。

血漿:全血中加抗凝劑,,血液凝固后取出的含凝血因子的淡黃色透明液體,。

區(qū)別1:取血清不加抗凝劑,;取血漿加抗凝劑。

區(qū)別2:血清中不含凝血因子,;血漿中含凝血因子

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2.實驗用血清還是血漿

生化:建議優(yōu)先選擇血清,,其次選擇肝素抗凝血漿

ELISA:建議優(yōu)先選擇血清,其次選擇肝素或EDTA抗凝血漿

凝血實驗:只能選擇枸櫞酸鈉抗凝血漿

血常規(guī):只能選擇EDTA抗凝全血

3. 不同抗凝劑對實驗檢測的影響

注意:有以下檢測指標(biāo)且需要用血漿的,,請選擇相應(yīng)的抗凝劑

生化:EDTA對無機(jī)離子,、堿性磷酸酶、肌酸激酶,、超氧化物歧化酶檢測有影響,;常規(guī)生化檢測可用肝素鋰抗凝血漿。

ELISA:常規(guī)指標(biāo)血清或EDTA及肝素抗凝血漿都可測,,凝血相關(guān)指標(biāo)需用枸櫞酸鈉抗凝,,以具體指標(biāo)為準(zhǔn)。

凝血四項:肝素及EDTA可能導(dǎo)致測不出來,,只能用3.2%或3.8%枸櫞酸鈉抗凝:全血=1:9比例抗凝,。

血常規(guī):肝素影響白細(xì)胞計數(shù),其他抗凝或多或少影響血細(xì)胞形態(tài),,EDTA為最佳抗凝劑,,最佳濃度比為1.5mgEDTA:1ml全血